植物组织培养为什么不生根（为什么要进行植物组织培养）
关于植物组织培养的疑惑 楼主啊我们是选修1，害我翻3翻了半天... 根据我的笔记，当生长激素含量大于细胞分裂素时，是促根生长，当细胞分裂素含量大于生长激素时，是促芽生长，当细胞分裂素含量等于生长激素时，促进愈伤组织生长. 还有楼主，你理解错了，先发生"脱分化"生成愈伤组织，然后才是"再分化"生成幼芽和幼根，也就是说脱分化和再分化的促进与根芽的促进无必然关系。 （PS:楼主你们的书教的还真多啊，感叹....实在理解不了就问问老师吧，打电话或上课时问，老师会解答你的。） （ps的ps:楼主你还要看看这个内容高考可考，如果不考就不要看了，以免浪费时间和精力） 最后祝楼主学业进步（你真用功啊） 植物组织培养常见问题解析 1. 培养基的配制注意事项 植物组织培养最常用到MS培养基，包含十几种化合物。因为有些化合物相遇会发生化学反应产生沉淀，影响培养基的营养成分，准备MS培养基需要配制多种高倍母液。且配制母液时，尤其涉及大量元素的母液时，一定要等一种成分溶解之后，再缓慢的添加另一种成分，切记“一锅煮”，即不能将各种化合物一齐添加进去。可选用Coolaber的MS培养基基盐（PM1011）在自行加入蔗糖和琼脂配制MS培养基，既经济，更高效。 2. 灭菌后培养基不凝胶或者凝胶偏软 植物凝胶、琼脂都对酸性条件敏感，pH值低于5很难成胶或凝胶偏软，切记高压灭菌前调节培养基pH值（5.5-6.0）。植物凝胶对二价阳离子浓度有要求，也就是相对于MS培养基，1/2MS培养基中植物凝胶要适当增加用量。另外灭菌后，倒出培养基前一定将培养基摇匀（ 带防烫手套 ），因为是琼脂密度大底层含量高，容易造成培养基强度不均匀。选择Coolaber改良MS培养基（PM10121，pH5.8±0.2）含蔗糖和 琼脂/植物凝胶 ，可以省去调pH步骤。 3. 水解酪蛋白有酸水解和酶水解之分，在使用过程中有无区别？ 水解酪蛋白对胚状体、不定芽的分化有良好的促进作用，通常用量在500mg/L，不管是酸解还是酶解，作用都是一样的，酶解更有利于发挥其作用。 4. 怎么溶解组培常用植物激素？ IAA、IBA、GA、玉米素、多效唑等应先溶解于少量95%的乙醇中，再加水定容配制成母液；如有结晶析出，可考虑用1/10体积的乙醇溶解后再定容；2，4-D易溶于碱性水溶液，可用少量1mol/L的NaOH溶液溶解后再慢慢加水定容；KT和6-BA先用少量的HCL溶解，再加水定容到一定的浓度。 5. 细胞分裂素使用浓度？ 一般情况下在培养基中加入0.1 10.0mg/L的细胞分裂素（6-BA/KT/ZT)，多数用1.0 2.0mg/L，KT浓度为0.5~2mg/L，这个也要根据实验材料来调整。细胞分裂素可以单独使用也可以与细胞生长素配合使用。 6. 哪些植物激素能高压灭菌，哪些不能高压灭菌。 IBA、NAA、6-BA、2,4-D可高温高压灭菌。 IAA、GA3、茉莉酸等不可高温高压灭菌，否则会分解失效，该类植物激素配制母液后需用0.22微孔滤膜过滤除菌，待培养基冷却（50-60℃）后尚未凝胶前加入混匀。 7. 培养基的pH值会凝胶硬度有无影响。 有影响。若将培养基pH值调的过高（大于6），则培养基偏硬，增加接种的阻力，会对外植体造成损伤。若将培养基pH值调的过低（小于4.5），则培养基不能凝固，起不到固定外植体的作用。一般将培养基的pH调节至5.5~6.0为宜。 8. 灭菌过程会否影响培养基的pH值？ 培养基中的蔗糖和激素在高温灭菌过程中容易酸化，培养基pH值灭菌后会有所下降，灭菌前培养基的pH值偏低可能导致培养基不凝或偏软。要求偏酸性的培养基可适当增加琼脂或植物凝胶的用量。 9. 应用75%的酒精进行种子消毒的过程中需要注意的问题 种子在消毒过程中使用75%的酒精使用应慎重，酒精渗透力极强，消毒时间过长会直接影响种子发芽率，所以建议消毒时间不应超过1min。 10. 原始繁殖材料的消毒 组培中，作为原始繁殖材料的外植体消毒，直接影响整个培养过程的进行。从室外采回来的外植体需进行消毒，首先用自来水冲洗外植体，冲洗时间可根据采集部位不同而定，一般在5 15分钟即可；关键在于在超净台中进行药剂的处理，常用的药剂处理有70%的乙醇溶液、9%的次氯酸钠溶液、和0.1 0.2%的升汞溶液，具体可根据实验材料而定。应注意的是经升汞灭菌的外植体必须用无菌水冲洗6~8次。 11. 怎么处理植物组织培养过程中出现的各种污染？ 植物组织培养过程中的污染来源主要分为3种，真菌、细菌和组织培养过程中的污染源。在操作过程中，难免有菌落入培养基或植物材料上，而导致污染。另外，不正确操作也会增加污染机率。预防措施：通风，保持室内空气干燥，紫外杀菌等。污染物品和污染培养基不要在培养室近距离开瓶洗刷。 污染原因判断： （1） 培养基污染 若污染菌类是零星分散在培养基中，则可确定是人为引起的污染。比如培养基灭菌不彻底，开瓶时间过长，灭菌后存放时间过长等； 高温蒸汽灭菌器的温度、压力、时间没有正确设置；过滤灭菌过程中滤膜孔径选择、过滤灭菌器的灭菌处理、过滤灭菌操作等均会影响培养基的灭菌效果。 措施：严格按照实验要求，灭菌规程操作。 （2）外植体污染 若污染菌类是从材料周围长起，且发生在5天以后，则说明是材料带的内生菌。可能是接种用具灭菌不彻底，接种时材料被污染；若从培养基以下开始长菌，发生时间较早，且有从里向外的趋势，则说明是切口引起的污染，原因可能是未剪去两个切口或者虽剪去切口但是所用器具带菌；或者是未及时发现污染苗，接种过程中引起交叉污染； 措施：取材时应仔细选择，以减少污染的发生。 （3）操作环节污染 接种室是否清洁、干燥、密封，是否经常用紫外灯照射、甲醛熏蒸、70%的酒精喷雾杀菌等；超净工作台摆放物品杂乱，长时间不换滤网，导致净化能力降低；接种用具灭菌不彻底引起污染；操作不正确等。 措施：每次接种前半个小时，用****20%****的新洁尔擦洗室内设备、工作台面，再用紫外灯照射****20min****。还可以喷洒****70%****的乙醇进行消毒。除了培养基、接种材料、器具和用具保证无菌外，同时在接种时还需要严格进行无菌操作。 出现污染后处理措施： （1）真菌污染后，如果已形成孢子，则必须经高压灭菌后扔掉；若使细菌污染，只要及时发现，将材料上部未感染菌的部分剪下转接，材料仍可以用。 （2）用抗生素等杀菌药剂的处理。但至今还未发现哪种抗生素能够对各种菌都有效，并且常常也会影响植物材料的正常生长分化。另一些药剂，虽有的杀菌效果好，但往往容易引起盐害，也无法利用。 12. 外植体的选择 为了使接种后的诱导得以成功，选择的外植体应该是幼嫩的，处于生长旺盛时期的，而且选择的外植体的体积不能过小，如若过小则会影响愈伤组织的形成，从而影响进一步的分化。因此，一般接种的外植体体积在0.5~1.0cm 2 的范围内即可。最适的为茎尖、带芽茎段，也可以利用叶子、子叶、根段、花器官组织等。 13. 植物茎段组织培养需要注意哪些问题 以茎段进行组织培养比较容易，一般取植物的嫩茎切段作为外植体，切成0.5~1cm长的小段进行接种，保证每个茎段有一个芽点和一片叶子，将芽点部位以下垂直插入培养基凝胶中进行生根培养。 14.外植体接种需要注意的操作事项 接种前首先进行灭菌消毒，接种所用的镊子、解剖刀、剪刀等工具需要提前高温高压灭菌，提前10分钟打开超净工作台，灭紫外15~20min，操作人员要用75%的酒精棉球擦手、工作台和器皿，解剖刀和镊子等随时擦酒精灼烧，晾凉后备用。在无菌培养皿中或滤纸上切割外植体，接种到培养基表面，注意瓶口倾斜接近酒精灯火焰。 15. 组织培养中材料褐化现象 不同品种以及生理状态引起的褐化状态不同。培养基过高浓度的无机盐及高水平细胞分裂素会使褐化现象加重。培养条件不当，例如光照过强、温度过高、培养时间过长等，均可使多酚氧化酶的活性提高，从而加重外植体的褐变程度。 防治措施： 选择合适的外植体。选择生长处于旺盛的外植体，可以使褐变现象明显减轻。合适的培养条件，无机盐成分、植物生长物质水平、适宜温度、及时继代培养均可以减轻材料的褐变现象。使用抗氧化剂，在培养基中，使用半胱氨酸、抗坏血酸、PVP等抗氧化剂能够较为有效地避免或减轻很多外植体的褐变现象。另外使用0.1% 0.5%的活性炭对防止褐变也有较为明显的效果。连续转移，对容易褐变的材料可间隔12 24小时的培养后，再转移到新的培养基上，这样经过连续处理7~10天后，褐变现象便会得到控制或大为减轻。 16. 材料玻璃化问题 植物材料不断地进行离体繁殖时，有些培养物的嫩茎、叶片往往会呈半透明状，呈水迹状，这种现象通常称为玻璃化。玻璃化为试管苗的生理失调症，试管苗生长缓慢、玻璃化的嫩茎不宜诱导生根，繁殖系数有所下降。当培养基上细胞分裂素水平较高时，容易出现玻璃化现象。愈伤组织的玻璃化问题主要表现在培养过程中愈伤组织松散，脆易碎。叶子或是长出的愈伤一段时间后在其周围出现水渍化，继而影响整个培养基。 防治措施: 在培养基中添加少量聚乙烯醇、脱落酸等物质，降低培养基中细胞分裂素含量及含氮化合物的用量，选用低NH 4 + 水平的B5培养基，都能够在一定程度上减轻玻璃化的现象发生。增加光照，对减轻试管苗玻璃化的现象有明显的作用；在培养基中添加活性炭、马铃薯汁、间苯三酚等可有效的减轻和防止玻璃化。 **17. 材料水浸状、变色、坏死、茎断面附近干枯 ** 可能原因： 表面杀菌剂过量，消毒时间过长，外植体选用不当（部位或时期）。 改进措施： 调换其他杀菌剂或降低浓度，缩短消毒时间，试用其他部位，生长初期取材。 18. 材料长期培养几乎无反应 可能原因： 培养基不适合，生长素的选择和用量不当，植物激素对生长发育和生理过程的调节作用，往往不是某一种植物激素的单独效果。环境温度不适宜。 改进措施： 更换培养基或调整培养基成分，尤其是调整盐离子浓度；调整激素的种类与配比，增加生长素用量，例如使用人工合成的生长素类似物2，4-D等可有效促进细胞分裂和伸长，新器官的分化和形成；调整培养温度等环境条件。 19. 愈伤组织生长过旺疏松 可能原因 ： 由于培养基中激素添加过量，培养室温度偏高，矿物质等无机盐含量不当等因素引起的。 改进措施 ：根据不同的品种、不同组织、不同器官，应适当减少激素用量，适当降低培养温度，调整无机盐（尤其是铵盐）含量，适当提高琼脂用量增加培养基硬度，避免愈伤组织生长过旺和疏松现象发生。 20. 愈伤组织生长缓慢太紧密 可能原因：细胞分裂素和生长素的用量过多，糖浓度过高。 改进措施：减少细胞分裂素用量，调整细胞分裂素与生长素比例，降低糖浓度。 21. 愈伤组织分化率低，畸形，分化出的芽多为叶状芽或丛芽，芽生长困难，不易成苗。培养时间长时，再次愈伤组织化 可能原因 ：生长素用量偏高，温度偏高。 改进措施 ：减少生长素用量，可以通过分化培养时在培养基中添加GA 3 （浓度在0.5~2mg/L之间）解决，并适当降低愈伤组织的培养温度。 22 丛生苗过于细弱，不适于生根或移栽 可能原因：细胞分裂素浓度过高或赤霉素使用不当，产生过多的不定芽；温度过高，光照短，光强不足；不及时的转移和分切，生长空间小。 改进措施：减少细胞分裂素用量，免用赤霉素；延长光照时间，增强光照；及时转接；降低接种密度；更换透气的封口膜等。 23. 组织培养过程中出现黄化 引起黄化的主要原因是培养基中Fe的含量不足，各种矿质营养不均衡；培养环境通气不良，瓶内有害气体积累（乙烯、氨气、甲醛）等会引起植物材料黄化脱落；激素配比不当；糖用量不足或长时间不转移；pH值变化过大；培养温度不适；光照不足等。 改进措施： 改善组培条件，在配制培养基过程中检查仪器设备是否准确；降低组培苗的接种密度，及时转接培养物；使用透气的封口膜改善瓶内通气状况；适当调节pH值、激素配比和无机盐浓度；控制培养室内温度，适当增加光照。 24. 植物组培培养基都有哪些？ MS培养基 ：1962年穆拉辛格和斯库格为烟草细胞培养而设计，其中硝酸盐的浓度高，适合植物原生质体、细胞和组织培养。 B5培养基：1968年甘伯尔格为大豆细胞培养而设计，铵的浓度低。适合木本植物的组织和细胞培养。 富盐平衡培养基 ：是目前使用最广泛的一类，特点是：无机盐浓度高，微量元素种类齐全，浓度高；元素间比例适当，离子平衡性好，具有较强的缓冲能力、稳定性好、营养丰富，一般培养时无需再加入有机成分。 高硝态氮培养基 ：代表性培养基有B5、N6、SH。特点是：硝酸钾浓度高，氨态氮浓度低，含有较高浓度的硫胺素（VB1）。 中盐培养基 ：大多是在MS培养基基础上进行改良设计。特点是：大量元素无机盐为MS的一半，微量元素种类减少、含量增高。维生素种类比MS增多，例如增加了生物素、叶酸等。 低盐培养基 ：特点是：无机盐、有机成分含量浓度低，多用作生根培养的培养基。 更多培养基参见 . 25. 木本植物（油料植物）组织培养中遇到再生苗无法生根时怎么办？ 一般常用的1/2MS或者1/2WPM基本能够满足。如果增殖用的基本都生产正常，到生根的时候出现落叶，只能通过排除法一样样分析。首先看下是不是培养温度太高，使用瓶盖后透气性差，导致乙烯积累。其次，可以适当添加少量分裂素，或者更换生长素，以及多种生长素混合使用。 26. 培养基中添加糖类作为碳源物质，有何重要作用？ 同样作为碳源为植物细胞提供能量来源，蔗糖较葡萄糖能更好地调节培养基内的渗透压。微生物生长所需的碳源最常用的是葡萄糖，采用蔗糖作为培养基的碳源，可一定程度上减少微生物的污染。生长素和蔗糖浓度决定愈伤组织中维管束的类型与数量。 27. 用于植物原生质体制备的材料，以及常用的渗透压调节剂 用于植物原生质体的材料需要选取生长旺盛的细胞，幼嫩的组织。无菌试管苗的叶片、胚轴及子叶、花药，以及愈伤组织（悬浮细胞）等。常用的调节原生质体渗透压的稳定剂主要有甘露醇、山梨醇、葡萄糖、蔗糖等。渗透压浓度一般为0.3~0.8 mol/L。 28. 组培苗移栽需要注意的问题 在移栽前打开三角瓶的封口膜，炼苗3 5d后取出小苗，用流水洗净根部的培养基，然后移栽到盛有灭过菌的蛭石的营养钵中过度一下，但要注意不可直接向营养钵中浇营养液（容易长菌），用透明的塑料薄膜罩住小苗3 5d后移栽到土里。 29. 光照强度多少lux是如何计算的 光照强度=光通量/单位面积。Lux的换算比较抽象，一般以烛光为计算单位，现在所用的以电源发光的光源，记作国际烛光，即25瓦特的电灯其光强度等于25国际烛光。1标准烛光=10.76 Lux。 30. LED光源在植物组织培养中的选择 光是植物生长中最重要的环境因子之一，并不是所有的光都有助于植物的光合作用。LED光源460nm左右的蓝光和660nm左右的红光是植物最需要的光波，对植物的生长发育起着关键性的作用。 急!生物题!扦插条长不出不定根的原因是什么?扦插是植物无性繁殖的重要手段之一，通常包括茎插、根插、叶插和微扦插。前三者在多肉植物的营养繁殖中占有很大比重，微扦插则是组织培养中快速微繁殖的一种途径。扦插是典型的营养繁殖，是不通过配子结合的生殖方式，扦插形成的植物和原植物是“同克隆系”的。所以，扦插繁殖属于克隆繁殖的一部分。 扦插的材料一般是植物的茎、叶和根。比如仙人掌科植物长出的子球、十二卷长出的侧芽以及切顶植株的顶部等都属于茎扦插；万象、玉扇、寿和岩牡丹的叶片也可以切下来扦插，这属于叶插；一些植物的主根，比如万象、黄叶地不容的根或块根也可以用来繁殖，这属于根插。也就是说，扦插的材料是多种多样的，只要是植物体的一部分，具有一定的生物活性就可以扦插成功，长出和母株相同的小苗。 扦插的基质要选择排水良好的土壤中，适当遮光，经过一定的时间，扦插材料会长出不定根，然后形成不定芽，最后长成完整的植物体。通常所说的扦插，一般指茎插，实际上叶插和根插叶可以划分入茎插。叶插的叶片基部必须带有茎组织，同样根插的根基部叶要带有茎组织。这是因为茎组织在外界环境中形成维管系统的能力比较强，容易分化为根和芽。 在植物材料扦插的时候，会发生一系列生理生化改变，包括激素水平的调控、营养物质的转运和代谢、光照的影响、水分和温度的影响等等。下面我就激素水平和营养转运为主简单谈谈扦插生根的生物学过程： 扦插包括不定根的形成以及芽的分化启动。其中最主要的，也是决定扦插是否成功的标志就是根系是否长出。那么说，不定根的形成是复杂的过程，如果能够掌握不定根形成的规律，对于操纵扦插来说则易如反掌了。不定根的形成过程大致如下：扦插材料受伤——生长素重新分布——插条薄壁细胞/维管束细胞脱分化——潜伏根细胞团形成——受到ctk刺激进行细胞分裂——根原基原始体形成——细胞重排——根原基形成——根分化——维管束连接——根原基生长——不定根形成。这个过程是经典的扦插机理，近几年来随着生物化学和分子生物学研究的不断深入，对扦插不定根形成的激励有了更深刻的认识，植物生理学家jarvis将不定根的形成划分为四个时期，各时期具有不同的激素调控效应： 第一期：诱导期。扦插材料受到创伤，脱离了母体，这个时候其体内生长素类物质将重新分配，向根部转运，积累在扦插材料的生根区。碳水化合物（糖类）也随同生长素一并向基部运输，以提供生根所需的营养。在植物根部生长素类物质积累（主要是吲哚乙酸），这些激素素促进了扦插材料生根区某些细胞的脱分化，由正常的维管束细胞转化为愈伤细胞，形成了具有分化能力的细胞。这个时期，大多数细胞处于高度活化状态，但并没有分裂。细胞的分裂大约出现在诱导期进行的24 ~48小时之后，这个时期生长素类物质浓度恰好达到促进分裂的浓度，同时在扦插材料整体物质转运的基础上，一部分细胞分裂素物质被转运到生根区，此时扦插就由诱导期转入启动早期。两个时期的标志就是一定浓度的细胞分裂素物质（ctk）转运到生根区，并启动了细胞分裂。 第二期：启动早期。扦插材料的生根区形成的愈伤细胞开始在ctk作用下分裂。经过一定的细胞分裂，部分细胞开始形成最原始的根原基细胞团，在ctk和吲哚乙酸作用下开始分化形成根原基和相关的维管束系统。这个时候，乙烯类物质和生长素类物质开始减少，大大促进了根原基的形成，随后进入启动晚期。这里要指出的是，为什么在这个时期会出现乙烯类物质和生长素类物质的减少：实际上，在扦插材料刚刚脱离母体的时候，有一种“伤害效应”，这个信号启动了植物细胞内“累积iaa防护系统”进而开始产生植物多酚，这些酚类物质和硼酸盐结合形成复合体，这种复合体激活“吲哚乙酸氧化酶”，此时恰好在启动早期和晚期的衔接处。此时iaa浓度大大降低，与此同时乙烯产生，这两者都可以协同根原基的形成，有人报道乙烯也可以提高iaa氧化酶的活性，也就是说，乙烯也是使得iaa水平降低的。 第三期：启动后期。这个时期，根原基形成了，在ctk作用下开始发出不定根。与此同时，不定根的形成会产生大量的ctk，这些ctk将向顶端转运，最终促进芽分化和茎的生长，此时，扦插由启动后期转入生长分化期。 第四期：生长分化期。这个时期的主要特点就是大量不定根形成和茎尖开始萌动生长，标志扦插成功。 在这四个时期中，吲哚乙酸（iaa）起着决定性作用，iaa的积累和从新分布决定了诱导期和启动初期的细胞生长转化情况，在第三期iaa的降低和乙烯的产生促进了根原基的形成。那么说，iaa是呈现波浪状作用的，这提示持续维持较高的生长素水平是不利于不定根的产生的。很多朋友喜欢大量使用生根粉，有些朋友的植物持续了很1年多都没有生根等等，这都是和iaa水平持续过高有关。所以，我们建议在促进生根的初期可以适当使用生长素类物质（生根粉的主要成分），但不可过多，把握生长素的效用持续2~7天为宜。与此同时，可以认为给硼酸盐，才促进iaa氧化酶的活性，降低生长素水平，此时可明显看到不定根的生成。同样，外施乙烯类物质（如：乙烯利）可以促进扦插的启动后期不定根的形成。 生长素类物质的生根作用也是不同的，近几年来合成的吲哚丁酸（iba）和1-萘乙酸（naa）都可以用来代替不稳定的吲哚乙酸。同时，iba促进形成长而细的不定根，而naa促进形成短粗的不定根。如果两者配合将达到很好的生根效果。赤霉素（gax）抑制启动早期的细胞分裂，所以它将抑制根系的形成：这提示，采用赤霉素抑制剂——植物生长延缓剂类物质（如：多效唑、比久等），可以促进根系的生长。 细胞分裂素类物质浓度如果过高，也会抑制扦插生根效应。乙烯对不定根形成的效果有各种结果，如果浓度适宜则会促进生根，若过高则抑制。 在营养物质方面，碳水化合物的含量也直接影响不定根的形成，主要原因是，碳水化合物作为能量的提供者，是保证激素发挥生物学效应的动力。所以，扦插材料如果营养状况良好对生根是有利的，所以进行扦插尽量在生长旺盛时期进行。如：星球数扦插选择春天，岩牡丹属选择秋天，原因是这个时期他们正好处于花芽分化阶段，储存了大量的养分，但不要等到开花以后再扦插，这样将大大降低生根率。另外，氮元素对生根由一定的抑制作用，同时钾和磷对生根有促进作用，钙离子对后期维管束的形成是必要的。所以建议对提供扦插材料的母株哚施用磷钾肥和钙物质：如，过磷酸钙和磷酸二氢钾，避免使用铵类和硝酸盐。 光照因素：光照对生长素的产生有一定的促进作用，所以建议在扦插时提供一定的光照。但是必须是暗光，原因是：过强的光照对尚无吸收养分能力的扦插材料具有一定的伤害作用，它将消耗扦插材料的养分和水，不利于后期的生根。 光照会造成生长素在顶端分布，不利于向基部转运。如果完全黑暗不但不利于生长素分泌，反而会促进霉菌生长，造成腐烂。 值得提出的是，一种经典的扦插材料的处理方法是很有效的，这就是“黄化处理”。就是在要进行扦插的部位用不透光的纸罩住，等待这个部位绿色减退，再动刀子将这个材料取下来，晾干伤口后扦插。原理是，黄化处理可以减弱植物多酚的合成，在初期提高生长素水平。同时黄化能促进生长素向基部富集，协调激素水平。所以黄化处理是值得提倡的。 “防霉粉”是一种具有高度脱水效果的钙制剂，其原理很简单，就是问了让伤口快速脱水，同时产生抑制细菌生长作用。它主要生理学作用，我们认为主要由三点：1.快速干燥伤口，防止材料过度脱水，缩短后期恢复生长时间。2.抑制细菌生长，碱性的钙盐具有抑制细菌生长的作用，在扦插中尤为重要。就算没有防霉粉，我们也要喷施杀菌物质。3.促进生长素向生根区富集。4.拮抗iaa氧化酶，提高iaa水平。5.协同硼元素，提高启动晚期生根作用。 在湿度方面建议提高空气湿度，而降低基质湿度。因为没有生根的扦插材料是不能吸收基质的水分的，而基质过湿会滋生霉菌造成腐烂。较高的空气湿度，能协调细胞气——水平衡，稳定代谢。所以一定的空气湿度是必须的。 以上是从几个大方面来讨论扦插的机制，许多东西如果仔细思考的话，和我们的日常栽培是密不可分的。一些朋友过分迷信生根粉什么的，其实是个大误区。 希望朋友们仔细思考一下扦插的每个阶段的特点，从而根据您的植物情况选择合适的环境和有效的生根促进物质。 增殖组培苗里面的苗长根不长高最后死亡是什么原因呢？导致组织培养中发生的遗传变异的因素主要有，离体条件本身、植物生长调节剂、培养基渗透压、培养温度及培养时问，外植体再生方式（通过愈伤组织分化的变异率高）等，一般认为，培养基的组成,特别是激素的组成和含量，对体细胞无性系变异有重大影响。 尽量不用2，4-D，降低培养基激素水平，减少继代次数，探索不定芽直接发生方法，培养温度忽过高 2009-10-11 13 其他回答 1条回答 潮汐、 香蕉组培苗生产过程中会发生变异。组培苗发生变异与培养材料、增殖代数，增殖系数和培养基激素浓度等因素有关，其主要发生在组培生产过程中的继代增殖环节。在正常情况下，用茎尖作培养材料，变异率就低，而用花蕾、叶片诱导出愈伤组织，再进行促细胞分化出丛芽的方法，其变异率就高。香蕉增殖芽培养代数越多，变异率就越大，一般要求增殖芽继代培养不能超过10代。在增殖芽继代培育过程中，激素浓度过高也会诱发变异。因此，要选择健康的吸芽作为增殖材料，严格控制培养代数和增殖系数，合理使用激素浓度。在增 植物组织培养中，为什么一般先诱导生芽后诱导生根，而不是反过来？这是受细胞分裂素和生长素的调控 一开始需使细胞分裂快,需细胞分裂素/生长素的比值大,当细胞分裂素/生长素的比值大时最先分化出芽. 而且外植体脱分化形成愈伤组织这一过程应在无光条件下进行培养，诱导愈伤组织再分化形成芽和根的过程应在光照条件下培养。要是整个阶段都没有光的话，最后分化形成芽肯定要受影响。 植物组织培养中,为什么一般先诱导生芽后诱导生根,而不是反过来?顶芽可以产生生长素促进生根.其实根冠也可产生生长素,却不能促进生芽,因为植物生长素运输方式比较特别由形态学上端运送到形态学下端,这是书本上的内容.我认为可能还有另一方面原因,生芽后产生绿叶光合作用可为植物提供养料 |